جلد 23، شماره 7 - ( 8-1403 )                   جلد 23 شماره 7 صفحات 588-578 | برگشت به فهرست نسخه ها

Ethics code: 396-2-039

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Khazaie M, Pooyanmehr M, Maleki A, Alimohammadi S, Haghnazari L. Protective Effect of Hydroalcoholic Extract of Ziziphora clinopodioides on Hepato-Renal Toxicity of Silver Nanoparticles in Male Rats: An Experimental Study. JRUMS 2024; 23 (7) :578-588
URL: http://journal.rums.ac.ir/article-1-7469-fa.html
خزائی میلاد، پویان مهر مهرداد، ملکی علی، علی محمدی صمد، حق نظری لیدا. اثر محافظتی عصاره هیدروالکلی کاکوتی کوهی (Ziziphora clinopodioides) بر سمیت کبدی-کلیوی نانوذرات نقره در موش‌های صحرایی نر: یک مطالعه تجربی. مجله دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان. 1403; 23 (7) :578-588

URL: http://journal.rums.ac.ir/article-1-7469-fa.html


دانشکده دامپزشکی، دانشگاه رازی،کرمانشاه، ایران.
متن کامل [PDF 512 kb]   (54 دریافت)     |   چکیده (HTML)  (65 مشاهده)
متن کامل:   (27 مشاهده)
مقاله پژوهشی
مجله دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان
دوره 23، مهر 1403، 588-578

اثر محافظتی عصاره هیدروالکلی کاکوتی کوهی (Ziziphora clinopodioides) بر سمیت
کبدی-کلیوی نانوذرات نقره در موش‌های صحرایی نر: یک مطالعه تجربی



میلاد خزائی[1]، مهرداد پویان‌مهر[2]، علی ملکی[3]، صمد علی‌محمدی[4]، لیدا حق­نظری[5]


دریافت مقاله: 17/05/1403 ارسال مقاله به نویسنده جهت اصلاح: 27/06/1403 دریافت اصلاحیه از نویسنده: 18/07/1403 پذیرش مقاله:22/07/1403






چکیده
زمینه و هدف: مطالعات سم‌شناسی روی نانوذرات نقره (Ag-NPs) به دلیل کاربردهای زیست‌پزشکی گسترده اهمیت زیادی دارد. به دلیل خاصیت آنتی‌اکسیدانی بالای کاکوتی کوهی، هدف از مطالعه حاضر تعیین تأثیر محافظتی این گیاه در برابر سمیت ناشی از Ag-NPs بود.
مواد و روش­ها: در این مطالعه تجربی، تعداد 30 سر موش صحرایی نر در محدوده وزنی 20±200 گرم به 5 گروه 6 تایی تقسیم شدند که شامل گروه کنترل، گروه دریافت‌کننده Ag-NPs با دوز ppm200، گروه‌های دریافت­کننده حیوانات عصاره هیدروالکلی کاکوتی کوهی با دوزهای 20، 60 و 180 میلی‌گرم بر کیلوگرم همراه با ( ppm200)Ag-NPs  بودند. تجویز ترکیبات به صورت خوراکی و یک‌بار در روز به‌مدت 30 روز بود. در پایان مطالعه، نمونه‌های خون جمع‌آوری و فعالیت سرمی آلکالین فسفاتاز، آلانین آمینوترانسفراز، آسپارتات آمینوترانسفراز، لاکتات دهیدروژناز و غلظت سرمی اوره و کراتینین اندازه‌گیری شدند. داده­ها با استفاده از آنالیز واریانس یک­طرفه و آزمون تعقیبی Tukey تجزیه­ و تحلیل شدند.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که تجویز Ag-NPs فعالیت سرمی آلکالین فسفاتاز، آلانین آمینوترانسفراز، آسپارتات آمینوترانسفراز، لاکتات دهیدروژناز و غلظت سرمی اوره و کراتینین را به طور معنی­داری در مقایسه با گروه کنترل افزایش داد (05/0>P). این تغییرات طی درمان با عصاره کاکوتی کوهی در دوزهای مختلف نسبت به گروه دریافت­کننده Ag-NPs بهبود یافت (05/0>P).
نتیجه‌گیری: بر اساس نتایج مطالعه حاضر کاکوتی کوهی ممکن است در پیش­گیری از سمیت Ag-NPs مؤثر باشد.
واژه‌های کلیدی: نانوذرات نقره، کاکوتی کوهی، سمیت کبدی-کلیوی، موش صحرایی

ارجاع: خزائی م، پویان‌مهر م، ملکی ع، علی‌محمدی ص، حق‌نظری ل، اثر محافظتی عصاره هیدروالکلی کاکوتی کوهی (Ziziphora clinopodioides) بر سمیت کبدی-کلیوی نانوذرات نقره در موشهای صحرایی نر: یک مطالعه تجربی. مجله دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان، سال 1403، دوره 23 شماره 7، صفحات: 588-578.
















 
مقدمه
کاربرد فناوری نانو در پزشکی اثرات مهمی بر مراقبت‌های بهداشتی دارد. نانوذرات نقره (Silver Nanoparticles; Ag-NPs) به‌دلیل خواص منحصر به فرد در مقیاس نانو در بسیاری از محصولات تجاری مورد استفاده قرار می‌گیرند. با استفاده روزافزون از محصولات Ag-NPs؛ علی­رغم این واقعیت که این مواد دارای مزایای بی‌شماری هستند، اما می‌توانند باعث ایجاد انواع مشکلات زیست محیطی و سلامت انسان شوند. بنابراین مطالعه روی این ترکیبات به یک موضوع مهمی تبدیل شده است (1). مسیرهایی که بدن می‌تواند در معرض Ag-NPs قرار گیرد شامل تماس مستقیم، استنشاق، بلع، تزریق داخل صفاقی یا داخل وریدی است که متعاقباً این مواد در گروه متنوعی از اندام­های حیاتی مانند مغز، کبد، کلیه، ریه و طحال تجمع می­کنند. مسیر و مدت قرار گرفتن در معرض، همراه با خواص فیزیکی و شیمیایی (مانند اندازه و سطح) Ag-NPs، به‌عنوان عوامل اصلی تعیین‌کننده در توزیع زیستی و پیامدهای پاتوفیزیولوژی شناخته می‌شوند (2). تحقیقات بسیاری برای درک سمیت Ag-NPs انجام شده است. در
 داخل سلول،
Ag-NPs می­توانند تولید گونه­های فعال اکسیژن
 (
Reactive Oxygen Species; ROS)، اختلال در متابولیسم انرژی و رونویسی ژن، و اتصال با گروه­های تیول آزاد آنزیم­ها و پروتئین‌های سلولی را القاء کنند. این مکانیسم­ها منجر به تشکیل سایتوکاین‌های پیش­التهابی، آسیب DNA و در نهایت مرگ سلولی در اثر آپوپتوز یا نکروز می‌شود (3). مطالعات نشان داده‌اند که
Ag-NPs پس از تجویز سیستمیک باعث ایجاد هپاتوتوکسیسیتی (4) و نفروتوکسیسیتی (5) می‌شوند. همچنین Ag-NPs می‌توانند از سد خونی-مغزی عبور کرده و باعث اختلال عملکرد آن، تخریب نورونی و التهاب آستروسیت در موش صحرایی شوند (6). علاوه بر این، تعدیل پاسخ ایمنی توسط Ag-NPs در چندین مطالعه تأیید شده است. برای مثال، پارامترهای ایمونولوژیکی شامل ایمونوگلوبولین G (Immunoglobulin G; IgG)، ایمونوگلوبولین
 
M (Immunoglobulin M; IgM)، کمپلمان C3 (Complement-3; C3)، کمپلمان C4 (Complement-4; C4) و پروتئین واکنشی
 
C (C-Reactive Protein; CRP) در پلاسمای موش‌هایی که به مدت 30 روز در معرض Ag-NPs قرار گرفته بودند به شکل معنی‌داری افزایش یافت (7).

گیاهان دارویی و فرآورده­های طبیعی مدت­ها است که به عنوان درمان سنتی برای بسیاری از بیماری­ها و نیز کاهش اثرات مسمویتی مورد استفاده قرار می­گیرند. بیشتر فعالیت­های گیاهان دارویی در درجه اول به ترکیبات فیتوشیمیایی آنها نسبت داده می­شود. این به دلیل اثر فارماکولوژیک و آنتی­اکسیدانی و نقش آنها در پیشگیری از استرس اکسیداتیو مرتبط با شرایط مختلف است (8). کاکوتی کوهی با نام علمی (Ziziphora clinopodioides) از خانواده نعناعیان (Lamiaceae) می­باشد. این گیاه در سراسر جهان به ویژه در ایران، افغانستان، عراق و ترکیه پراکنده بوده و یکی از پرمصرف‌ترین گیاهان دارویی است که در نواحی غربی ایران به ویژه استان کرمانشاه رشد زیادی دارد (9). آنالیز فیتوشیمیایی گیاه کاکوتی کوهی اجزای مختلف فعال بیولوژیکی از قبیل ترکیبات فنولی و فلاونوئیدی با فعالیت آنتی‌اکسیدانی را نشان داده است که از مهم­ترین آن‌ها می­توان Pulegone، Carvacrol، Thymol، p-cymene و γ-terpinene را نام برد (10، 9). تا کنون مطالعات متعددی در زمینه این گیاه انجام شده است. برای مثال اثرات ضد دردی (9)، آنتی‌اکسیدانی و ضدمیکروبی (11) و ضد التهابی (12) به تأیید رسیده است. علاوه بر این، تأثیر محافظتی و ترمیم‌کنندگی عصاره هیدروالکلی Ziziphora clinopodioides بر آسیب­های بیضه­ای ناشی از تزریق استرپتوزوتوسین (Streptozotocin; STZ) و القاء دیابت در موش‌های صحرایی نر گزارش شده است (13). همچنین، مهار آپوپتوز و پیشرفت رژنراسیون نورونی به دنبال تیمار حیوانات با عصاره‌های آبی و الکلی کاکوتی کوهی پس از آسیب نخاعی مشاهده شد (14). مطالعه Sedighi و همکاران نیز نشان داد که درمان با عصاره هیدروالکلی این گیاه از آسیب‌های حافظه، اختلالات عصبی مرتبط با آلزایمر و مشکلات شناختی ناشی از تزریق داخل بطن مغزی STZ در موش‌های صحرایی نر جلوگیری کرد (15). بنابراین، بر اساس مطالب ذکر شده و با توجه به خواص آنتی­اکسیدانی و ضد التهابی ویژه گیاه کاکوتی کوهی و اینکه در بررسی منابع در خصوص اثرات محافظتی گیاه مذکور بر سمیت ناشی از Ag-NPs موردی مشاهده نگردید، مطالعه حاضر با هدف تعیین اثر حفاظتی عصاره هیدروالکلی کاکوتی کوهی (Ziziphora clinopodioides) بر سمیت ناشی از Ag-NPs در موش‌های صحرایی نر بالغ انجام شد.
مواد و روش‌ها
برای انجام تحقیق، تعداد 30 سر موش صحرایی نر نژاد ویستار در محدوده وزنی 20±200 گرم و سن 8 هفته که از واحد پرورش و نگهداری حیوانات آزمایشگاهی دانشکده دامپزشکی دانشگاه رازی تهیه شده بودند، مورد استفاده قرار گرفت. مطالعه حاضر در گروه علوم پایه و پاتوبیولوژی دانشکده دامپزشکی دانشگاه رازی در سال 1396 انجام شد. حیوانات در قفس‌های جداگانه در شرایط نوری استاندارد (12 ساعت روشنایی و 12 ساعت تاریکی)، درجه حرارت 2±22 درجه سانتی‌گراد و رطوبت نسبی 5±55 درصد نگه­داری شدند. دسترسی حیوانات به آب و غذا آزاد بود و از غذای پلیت آماده برای تغذیه موش‌ها استفاده شد. اصول اخلاقی هنگام کار با حیوانات رعایت گردید. حیوانات پس از یک هفته سازش با محیط آزمایشگاه، به طور تصادفی به 5 گروه 6 تایی تقسیم شدند (جدول 1). این مطالعه همچنین دارای کد اخلاق از دانشگاه رازی کرمانشاه به شماره ثبتی Ethic Nubmer: 396-2-039 می‌باشد.
 
جدول 1- گروه­بندی تیمارهای مختلف استفاده شده در آزمایش
گروه 1 کنترل؛ دریافت کننده نرمال سالین
گروه 2 دریافت کننده ( ppm200)Ag-NPs
گروه 3 دریافت کننده عصاره هیدروالکلی Z. clinopodioides (20 میلی­گرم بر کیلوگرم)+ ( ppm200)Ag-NPs   
گروه 4 دریافت کننده عصاره هیدروالکلی Z. clinopodioides (60 میلی­گرم بر کیلوگرم)+ ( ppm200)Ag-NPs   
گروه 5 دریافت کننده عصاره هیدروالکلی Z. clinopodioides (180 میلی­گرم بر کیلوگرم)+ ( ppm200)Ag-NPs   
 
در تمامی گروه‌های مورد مطالعه، همه محلول­ها به صورت تازه و به صورت خوراکی و به مدت 30 روز به حیوانات تجویز شدند. در مطالعه حاضر، دوزهای مورد استفاده برای Ag-NPs بر اساس مطالعات قبلی (7، 16) و با در نظر گرفتن تحقیقات انجام شده در آزمایشگاه فیزیولوژی و فارماکولوژی انتخاب شد. Ag-NPs مورد استفاده در این تحقیق با کیفیت بالا و درجه خلوص بالای 99 درصد بوده و از شرکت پیشگامان نانو مواد ایرانیان (مشهد، ایران) تهیه شد. برای ارزیابی اندازه و مورفولوژی Ag-NPs از میکروسکوپ الکترونی روبشی (Scanning Electron Microscope; SEM) و میکروسکوپ الکترونی عبوری (Transmission Electron Microscope; TEM) استفاده شد که توزیع یک دست نانوذرات و ساختار کروی آنها را مشخص ساخته و نشان داد ابعاد این نانوذرات 40-20 نانومتر می‌باشد. لازم به ذکر است که این آزمایشات توسط شرکت تهیه ‌کننده انجام گرفت که در شکل 1 آمده است. پودر عصاره هیدروالکلی کاکوتی کوهی از مجتمع صنایع دینه ایران (شرکت داروسازی، تهران، ایران) تهیه شد. گیاه تازه کاکوتی کوهی (تأیید شده توسط گیاه شناس: دکتر معصومی، با شماره هرباریوم 6816) جمع‌آوری گردید و به قطعات کوچک برش داده شد. برگ‌های کاکوتی کوهی در دمای اتاق تمیز و در زیر سایه با هوا خشک شدند و سپس با آسیاب آزمایشگاهی آسیاب شدند تا فرم پودری آن به دست آید. عصاره‌گیری برای استخراج مواد مؤثر به روش خیساندن انجام گرفت. به این صورت که پودر گیاه با 400 میلی‌لیتر اتانول 80 درصد در دستگاه سوکسله به مدت 72 ساعت قرار گرفت. سپس عصاره هیدروالکلی سه بار از کاغذ صافی واتمن شماره 1 (Whatman, UK) عبور داده شد. در مرحله آخر با استفاده از دستگاه روتاری اواپراتور (Laborota 4000, Heidolph, Germany) با 200 دور در دقیقه و در دمای 40 درجه سانتی‌گراد خشک گردید. پس از خشک شدن کامل، در داخل شیشه‌های تیره و در دمای 4 درجه سانتی­گراد تا زمان استفاده نگهداری شد.
پس از تهیه عصاره گیاه کاکوتی کوهی؛ جهت تیمار حیوانات، از عصاره خشک گیاه با دوزهای 20، 60 و 180 میلی‌گرم بر کیلوگرم بر اساس وزن بدن حیوانات توزین شده و در نرمال سالین تهیه شده و با حجم 5/0 میلی­لیتر به صورت روزانه به موش‌های گروه‌های مورد نظر با سرنگ مخصوص به صورت گاواژ داده شد.


شکل 1- تصاویر SEM و TEM نانوذرات نقره (Ag-NPs)
در پایان دوره آزمایش (30 روز)، تمام موش‌ها وزن شده و با تزریق داخل صفاقی کتامین (60 میلی‌گرم بر کیلوگرم) و زایلازین (20 میلی‌گرم بر کیلوگرم) بیهوش شدند. سپس مستقیماً به کمک سرنگ 5 میلی­لیتری از قلب حیوانات نمونه خون گرفته شد. نمونه­های خون با سانتریفیوژ (Hettich, EBA200S, Germany) با سرعت 2000 دور در دقیقه به مدت 10 دقیقه در دمای اتاق سانتریفیوژ شدند. نمونه­های سرم به میکروتیوب استریل انتقال داده شده و تا آنالیز بیوشیمیایی در دمای 20- درجه سانتی‌گراد نگهداری شدند (7، 17). سطوح سرمی آلکالین فسفاتاز (Alkaline Phosphatase; ALP)، آلانین آمینوترانسفراز (Alanine Aminotransferase; ALT)، آسپارتات آمینوترانسفراز (Aspartate Aminotransferase; ASTلاکتات دهیدروژناز (Lactate Dehydrogenase; LDH)، اوره و کراتینین (Creatinine) با استفاده از کیت‌های تشخیصی تجاری تهیه شده از شرکت پارس آزمون (تهران، ایران) و توسط اتوانالایزر (Technicon RA-1000, Luton, UK) در آزمایشگاه مرکزی دانشکده دامپزشکی دانشگاه رازی تعیین شدند (18). فعالیت آنزیم­هایALP ، ALT، AST و LDH به صورت واحد بین‌المللی در لیتر (IU/L) و غلظت اوره و کراتینین به صورت میلی‌گرم در دسی‌لیتر (mg/dl) گزارش گردید (18).
برای آنالیز داده‌های جمع­آوری شده از نرم‌افزار SPSS نسخه 23 استفاده گردید. داده‌ها به صورت انحراف معیار ± میانگین گزارش شده‌اند. پس از تأیید نرمال بودن توزیع فراوانی داده‌های جمع‌آوری ‌شده، با استفاده از آزمون Shapiro-Wilk (05/0<p) و تساوی واریانس گروه‌ها توسط آزمون Levene (05/0<p)، به منظور مقایسه میانگین گروه­ها از آنالیز واریانس یک‌طرفه و آزمون تعقیبی Tukey استفاده شد. سطح معنی‌داری در آزمون‌ها 05/0>p در نظر گرفته شد.
نتایج
القاء سمیت با Ag-NPs فعالیت سرمی آنزیم‌های ALP، ALT، AST و LDH را در مقایسه با گروه کنترل افزایش داد (05/0>p). تجویز عصاره کاکوتی کوهی در دوزهای 20، 60 و 180 میلی‌گرم بر کیلوگرم سطوح بالای پارامترهای ذکر شده را کاهش داد (05/0>p) (نمودار 1؛ الف-ت). غلظت سرمی اوره در گروه تیمار شده با Ag-NPs در مقایسه با گروه کنترل افزایش یافت (05/0>p). تیمار با دوزهای مختلف عصاره کاکوتی کوهی سبب کاهش معنی‌دار غلظت سرمی اوره گردید (05/0>p) (نمودار 2؛ الف). همچنین، غلظت سرمی کراتینین در گروه دریافت کننده Ag-NPs در مقایسه با گروه کنترل افزایش یافت (05/0>p). دوز 20 میلی‌گرم بر کیلوگرم عصاره کاکوتی کوهی تأثیری بر افزایش سطح سرمی کراتینین نداشت (05/0˃p) ولی عصاره کاکوتی کوهی (دوزهای 60 و 180 میلی‌گرم بر کیلوگرم) این افزایش را بهبود بخشیدند (05/0>p) (نمودار 2؛ ب). 
 



نمودار 1- اثر عصاره Ziziphora clinopodioides بر فعالیت سرمی آنزیم­های آلکالین فسفاتاز (ALP) (الف)، آلانین آمینوترانسفراز (ALT) (ب)، آسپارتات آمینوترانسفراز (AST) (پ) و لاکتات دهیدروژناز (LDH) (ت) در سمیت ناشی از نانوذرات نقره (Ag-NPs) در موش­های صحرایی نر. نمودار به صورت انحراف معیار±میانگین رسم شده است. داده‌ها توسط آنالیز واریانس یک­طرفه و آزمون تعقیبی Tukey آنالیز شدند. * اختلاف معنی­داری نسبت به گروه کنترل (05/0>p) و # اختلاف معنی­داری نسبت به گروه تیمار شده با Ag-NPs (05/0>p) (6n=).

نمودار 2- اثر عصاره Ziziphora clinopodioides بر غلظت سرمی اوره (الف) و کراتینین (ب) در سمیت ناشی از نانوذرات نقره (Ag-NPs) در موش‌های صحرایی نر. نمودار به صورت انحراف معیار±میانگین رسم شده است. داده­ها توسط آنالیز واریانس یک­طرفه و آزمون تعقیبی Tukey آنالیز شدند. * اختلاف معنی‌داری نسبت به گروه کنترل (05/0>p) و # اختلاف معنی­داری نسبت به گروه تیمار شده با Ag-NPs (05/0>p) (6n=).
 
بحث
مطالعه حاضر با هدف تعیین اثر بهبود دهندگی عصاره هیدروالکلی کاکوتی کوهی (Ziziphora clinopodioides) بر سمیت ناشی از نانوذرات نقره (Ag-NPs) در موش­های صحرایی نر بالغ طراحی شد. نانوتکنولوژی به دلیل افزایش کاربردهای متنوع نانومواد در بسیاری از جنبه‌های زندگی بشر، حوزه‌ای است که در سال‌های اخیر به سرعت در حال توسعه است. نانوذرات به دلیل ویژگی‌های منحصر به‌ فرد از جمله اندازه کوچک و سطح ویژه بالا، سمیت بالقوه‌ای نسبت به اندازه‌های بزرگ‌تر دارند (19). یکی از نانو مواد پرکاربرد؛ Ag-NPs بوده که به دلیل اثرات ضد باکتریایی، اثرات ضد ویروسی و فعالیت ضد قارچی، یک نانو محصول برجسته با کاربردهای بالقوه در پزشکی و بهداشت محسوب می­شوند. استفاده مکرر از Ag-NPs در محصولات مصرفی منبع مهمی برای قرار گرفتن در معرض آنها می­باشد (20). راه‌های اصلی ورود Ag-NPs عبارتند از: مصرف خوراکی، استنشاق، تماس پوستی، تزریق داخل صفاقی و داخل وریدی. Ag-NPs می‌توانند مستقیماً با عبور از غشاهای بیولوژیکی وارد گردش خون سیستمیک شوند. سپس Ag-NPs در اندام­های مختلف توزیع شده و باعث ایجاد اثرات پاتوفیزیولوژیکی خاص اندام میشوند (21).
بر اساس نتایج مطالعه ما، تجویز خورراکی Ag-NPs به مدت 30 روز فعالیت سرمی ALP، ALT، AST و LDH را به طور معنی‌داری افزایش داد که می­توان به عنوان شاخصی برای نارسایی کبد  در نظر گرفت. این تغییرات طی درمان با عصاره هیدروالکلی Z. clinopodioides در دوزهای مختلف بهبود یافت. چندین مطالعه اثر مسمومیت کبدی Ag-NPs را از طریق مسیرها و دوزهای مختلف مورد بررسی قرار داده‌اند (4، 22، 23) که با نتایج مطالعه حاضر مطابقت دارد. بلافاصله پس از جذب، Ag-NPs به پروتئین‌های پلاسما و سلول‌های خونی متصل شده و از طریق ورید باب به کبد منتقل می‌شوند. تجمع بیش از حد Ag-NPs در کبد گونه‌های فعال اکسیژن (ROS) و رادیکال‌های آزاد را القاء می‌کنند، در نتیجه به اندامک‌های داخل سلولی آسیب رسانیده و مسیرهای سیگنال درون سلولی را به سمت آپوپتوز یا نکروز هدایت می‌کنند. Ag-NPs همچنین باعث ایجاد استرس اکسیداتیو، پراکسیداسیون لیپیدی و افزایش سایتوکاین‌های پیش التهابی مانند IL-1β، IL-6 و TNF-α در بافت کبد میشوند (24، 22). آنتیاکسیدانها به عنوان پاک کنندههای قوی برای رادیکال‌های آزاد عمل کرده و از بروز شرایط پاتولوژیکی مرتبط با استرس اکسیداتیو جلوگیری میکنند. کاهش فعالیت سیستم آنتیاکسیدانی در گروه تیمار شده با Ag-NPs در موش‌های صحرایی نر نیز گزارش شده است (25). بنابراین، به نظر می رسد Ag-NPs افزایش سطح سرمی آنزیم‌های کبدی را از طریق مکانیسم‌های ذکر شده تحریک می‌کنند و در نهایت منجر به تخریب هپاتوسیت‌ها و نشت این آنزیم‌ها از سیتوزول‌های کبدی به گردش خون می‌شوند.
گزارش شده است که Ag-NPs در صورت مصرف خوراکی و تزریق داخل صفاقی در کلیه‌ها تجمع می‌یابند و باعث ایجاد مسمومیت کلیوی و آسیب بافت کلیه در موش صحرایی (26) و موش سوری (27) می‌شوند. در این راستا، از یافته­های دیگر مطالعه حاضر این بود که القاء سمیت با Ag-NPs غلظت سرمی اوره و کراتینین را افزایش داد که به عنوان شاخصی برای نارسایی عملکرد کلیه محسوب می‌شود. مصرف عصاره هیدروالکلی
 Z.clinopodioides در دوزهای مختلف موجب کاهش سطوح افزایش یافته پارامترهای مذکور شد. این نتایج ثابت می‌کنند که عصاره کاکوتی کوهی بر روی عملکرد بافت‌های کبد و کلیه در سمیت ناشی از Ag-NPs دارای اثر محفاظتی می‌باشد. علیرغم کبد، کلیه‌ها نیز به عنوان ارگان هدف اصلی به Ag-NPs حساس هستند. Ag-NPs می­توانند آسیب اکسیداتیو را از طریق یک فرآیند با واسطه ROS القاء کنند. همچنین، Ag-NPs از طریق کاهش مکانیسم­های دفاعی آنتی­اکسیدانی ناشی از برهمکنش با سیستم آنتی­اکسیدانی، موجب تولید بیش از حد رادیکال‌های آزاد می‌شوند (28). آسیب اکسیداتیو، فرآیندهای پیش‌التهابی، القاء آپوپتوز و تغییرات ساختارهای آناتومیکی از عوامل اصلی مربوط به نفروپاتی هستند. آسیب کلیوی و اختلال ظرفیت فیلتراسیون گلومرولی کلیه، میزان اوره و کراتینین را در سرم افزایش می‌دهد (29).

از جمله ترکیبات موجود در گیاهان خانواده نعناعیان می‌توان به Pulegone، Carvacrol، Thymol، p-cymene، γ-terpinene و Limonene اشاره کرد. به عنوان مثال؛ Carvacrol (22/65 درصد)، Thymol (51/19 درصد)، p-cymene (86/4 درصد) و γ-terpinene (63/4 درصد) به عنوان ترکیبات اصلی اسانس
Z. clinopodioides گزارش گردید و نشان داده شد که دارای خاصیت ضد دردی می­باشد (9). مطالعه Yang و همکاران نیز اثرات آنتی‌اکسیدانی، ضد التهابی و مهار تولید سایتوکاین‌های التهابی توسط Pulegone را نشان داد (30). علاوه بر این، Bacanli و همکاران اثر آنتی‌اکسیدانی و از بین بردن رادیکال‌های آزاد توسط Limonene را مشاهده کردند (31). در این مطالعه، بروز اثرات محافظتی و بهبود پارامترهای کبدی و کلیوی توسط گیاه کاکوتی کوهی در برابر سمیت القاء شده با Ag-NPs در موشهای صحرایی نر را احتمالاً می‌توان به داشتن ترکیبات ذکر شده که اﺛﺮات ﺑﻴﻮﻟﻮژﻳﻜﻲ آنها طبق مطالعات قبلی به تأیید رسیده است، نسبت داد. اگرچه مطالعه حاضر چندین یافته مهم داشت، اما محدودیت‌هایی نیز در این تحقیق وجود دارد؛ از جمله محدودیت‌های روش‌شناسی و فنی می‌توان به عدم دسترسی به داده­هایی در مورد خاصیت آنتی‌‌اکسیدانی انواع مختلف عصاره گیاه کاکوتی کوهی (آبی، اتانولی و متانولی) در شرایط in vitro و in vivo و نیز نبود امکانات لازم جهت یافتن ماده مؤثره عصاره کاکوتی کوهی به منظور شناخت دقیق مکانیسم اثر آن اشاره کرد. بنابراین، پیشنهاد می‌شود در در پژوهش‌های آینده رویکردهای تجربی و ارزیابی نشانگرهای استرس اکسیداتیو و سیستم‌های آنتی‌اکسیدانی جهت درک بهتر نتایج مورد توجه قرار گیرد.

نتیجه‌گیری
نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد که عصاره هیدروالکلی گیاه کاکوتی کوهی (Ziziphora clinopodioides) اثر محافظتی بر آسیب کبدی و کلیوی القاء شده با نانوذرات نقره (Ag-NPs) دارد که می‌تواند ناشی از حضور ترکیبات فنولی و فلاونوئیدی و اثر هم‌افزایی بین این ترکیبات باشد. با این وجود استفاده بالینی از این گیاه نیازمند تحقیقات بیشتر جهت روشن شدن مسیرهای سیگنالینگ سلولی و مولکولی می‌باشد.
تشکر و قدردانی
این مقاله مستخرج از پایان‌نامه دکتری عمومی دامپزشکی مصوب معاونت پژوهشی دانشگاه رازی می‌باشد. به این ‌وسیله از معاونت محترم پژوهشی دانشگاه رازی به‌ دلیل حمایت‌های مالی تقدیر و تشکر می‌گردد.
تعارض در منافع: نویسندگان مقاله هیچ گونه تعارض منافعی را گزارش نمی‌کنند.
حامی مالی: پژوهش حاضر توسط معاونت پژوهشی دانشگاه رازی کرمانشاه حمایت مالی شد.
ملاحظات اخلاقی (کد اخلاق): این مطالعه توسط کمیته اخلاق دانشگاه رازی کرمانشاه با کد 039-2-396 تأیید شده است.
مشارکت نویسندگان:
- طراحی ایده: صمد علی‌محمدی، مهرداد پویان‌مهر
- روش کار: صمد علی‌محمدی، مهرداد پویان‌مهر
- جمع­آوری داده‌ها: مهرداد پویان‌مهر، میلاد خزائی، علی ملکی، لیدا حق‌نظری
- تجزیه و تحلیل داده­ها: صمد علی‌‌محمدی، مهرداد پویان‌مهر، میلاد خزائی
- نظارت: صمد علی‌محمدی، مهرداد پویان‌مهر
- مدیریت پروژه: صمد علی‌محمدی، مهرداد پویان‌مهر
- نگارش- پیش نویس اصلی: صمد علی‌محمدی
- نگارش- بررسی و ویرایش: صمد علی‌محمدی
 

References
 
1. Nie P, Zhao Y, Xu H. Synthesis, applications, toxicity and toxicity mechanisms of silver nanoparticles: A review. Ecotoxicol Environ Saf 2023; 253: 114636.
2. Fewtrell L, Majuru B, Hunter PR. A re-assessment of the safety of silver in household water treatment: rapid systematic review of mammalian in vivo genotoxicity studies. Environ Health 2017; 16(1): 66.
3. Ferdous Z, Nemmar A. Health impact of silver nanoparticles: a review of the biodistribution and toxicity following various routes of exposure. Int J Mol Sci 2020; 21(7): 2375.
4. Naguib M, Mahmoud UM, Mekkawy IA, Sayed AE. Hepatotoxic effects of silver nanoparticles on Clarias gariepinus; Biochemical, histopathological, and histochemical studies. Toxicol Reports 2020; 7: 133-41.
5. Albrahim T. Silver nanoparticles-induced nephrotoxicity in rats: the protective role of red beetroot (Beta vulgaris) juice. Environ Sci Pollut Res 2020; 27: 38871-80.
6. Elblehi SS, Abd El-Maksoud EM, Aldhahrani A, Alotaibi SS, Ghamry HI, Elgendy SA, et al. Quercetin abrogates oxidative neurotoxicity induced by silver nanoparticles in Wistar rats. Life 2022; 12(4): 578.
7. Shamohammadi M, Pooyanmehr M, Maleki A, Alimohammadi S. Evaluation of protective and immunomodulatory effects of hydroalcoholic extract of Scrophularia striata on silver nanoparticle-induced toxicity in male rats. Arch Adv Biosci 2021; 12(1): 7-17.
8. Paydar E, Alimohammadi S. Anxiolytic-like effect of hydroalcoholic extract of Cynara scolymus L. in male mice: an experimental study. J Rafsanjan Univ Med Sci 2023; 22(8): 805-16. [Farsi].
9. Mohammadifard F, Alimohammadi S. Chemical composition and role of opioidergic system in antinociceptive effect of Ziziphora clinopodioides essential oil. Basic Clin Neurosci 2018; 9(5): 357-66.
10. Ahmadi A, Gandomi H, Derakhshandeh A, Misaghi A, Noori N. Phytochemical composition and in vitro safety evaluation of Ziziphora clinopodioides Lam. ethanolic extract: Cytotoxicity, genotoxicity and mutagenicity assessment. J Ethnopharmacol 2021; 266: 113428.
11. Shahbazi Y. Chemical compositions, antioxidant and antimicrobial properties of Ziziphora clinopodioides Lam. essential oils collected from different parts of Iran. J Food Sci Technol 2017; 54(11): 3491-503.
12. Amini-Shirazi N, Hoseini A, Ranjbar A, Mohammadirad A, Khoshakhlagh P, Yasa N, et al. Inhibition of tumor necrosis factor and nitrosative/oxidative stresses by Ziziphora clinopoides (Kahlioti); a molecular mechanism of protection against dextran sodium sulfate-induced colitis in mice. Toxicol Mech Methods 2009; 19(2): 183-9.
13. Bolbol Haghighi N, Molzemi S, Goli Sh, Mohammad Sadeghi H, Aminian M. The effect of hydroalcoholic extract of Ziziphora clinopodioides Lam on testicular damage caused by diabetes mellitus in male rats. J Babol Univ Med Sci 2017; 19(12): 43-9. [Farsi].
14. Abdolsamad Halaf IA, Tehranipour M, Mahmodzadeh Akharat H. Effect of aqueous and alcoholic extracts of Ziziphora clinopodioides on apoptosis and alteration of caspase-3 and caspase-9 gene expression in anterior horn neurons of the spinal cord after sciatic nerve compression in male rats. J Birjand Univ Med Sci 2021; 28(3): 222-35. [Farsi].
15. Sedighi S, Tehranipour M, Vaezi G, Vida Hojati V, Hashemi-Moghaddam H. The effect of hydroalcoholic extract of Ziziphora clinopodioides L. on spatial memory and neuronal density of hippocampal CA1 region in rats with sporadic Alzheimer's disease. Avicenna J Phytomed 2019; 9(4): 362-73.
16. Tiwari R, Singh RD, Khan H, Gangopadhyay S, Mittal S, Singh V, et al. Oral subchronic exposure to silver nanoparticles causes renal damage through apoptotic impairment and necrotic cell death. Nanotoxicology 2017; 11(5): 671-86.
17. Abyari M, Alimohammadi S, Pooyanmehr M, Ghashghaii A, Maleki A. Assessment of the effects of cyclooxygenase inhibitors on the immune status following surgery in adult male rats. Qom Univ Med Sci J 2021; 15(2):110-9. [Farsi].
18. Bahrami E, Pooyanmehr M, Maleki A, Alimohammadi S. The protective effects of Allium saralicum aqueous extract on blood glucose and some related biochemical factors in alloxan-induced diabetic male rats: an experimental study. J Rafsanjan Univ Med Sci 2022; 21(7):729-40. [Farsi].
19. Khan Y, Sadia H, Ali Shah SZ, Khan MN, Shah AA, Ullah N, et al. Classification, synthetic, and characterization approaches to nanoparticles, and their applications in various fields of nanotechnology: A review. Catalysts 2022; 12(11): 1386.
20. Magdy G, Aboelkassim E, Abd Elhaleem SM, Belal F. A comprehensive review on silver nanoparticles: synthesis approaches, characterization techniques, and recent pharmaceutical, environmental, and antimicrobial applications. Microchem J 2024; 196: 109615.
21. Ferdous Z, Nemmar A. Health impact of silver nanoparticles: a review of the biodistribution and toxicity following various routes of exposure. Int J Mol Sci 2020; 21(7): 2375.
22. Shehata AM, Salem FM, El-Saied EM, Abd El-Rahman SS, Mahmoud MY, Noshy PA. Evaluation of the ameliorative effect of zinc nanoparticles against silver nanoparticle-induced toxicity in liver and kidney of rats. Biol Trace Elem Res 2022; 200: 1201-11.
23. Ji JH, Jung JH, Kim SS, Yoon JU, Park JD, Choi BS, et al. Twenty-eight-day inhalation toxicity study of silver nanoparticles in Sprague-Dawley rats. Inhal Toxicol 2007; 19(10): 857-71.
24. Lee SH, Jun BH. Silver nanoparticles: synthesis and application for nanomedicine. Int J Mol Sci 2019; 20: 865.
25. Ansar S, Alshehri SM, Abudawood M, Hamed SS, Ahamad T. Antioxidant and hepatoprotective role of selenium against silver nanoparticles. Int J Nanomed 2017; 12: 7789-97.
26. Kim WY, Kim J, Park JD, Ryu HY, Yu IJ. Histological study of gender differences in accumulation of silver nanoparticles in kidneys of Fischer 344 rats. J Toxicol Environ Health Part A 2009; 72: 1279-84.
27. Alarifi S, Ali D, Gurabi MAA, Alkahtani S. Determination of nephrotoxicity and genotoxic potential of silver nanoparticles in Swiss albino mice. Toxicol Environ Chem 2017; 99(2):294-301.
28. Chen R, Zhao L, Bai R, Liu Y, Han L, Xu Z, et al. Silver nanoparticles induced oxidative and endoplasmic reticulum stresses in mouse tissues: implications for the development of acute toxicity after intravenous administration. Toxicol Res 2016; 5(2): 602-8.
29. Ranjbar A, Firozian F, Soleimani Asl S, Ghasemi H, Taheri Azandariani M, Larki A, et al. Nitrosative DNA damage after sub-chronic exposure to silver nanoparticle induces stress nephrotoxicity in rat kidney. Toxin Rev 2018; 37(4): 327-33.
30. Yang Q, Luo J, Lv H, Wen T, Shi B, Liu X, et al. Pulegone inhibits inflammation via suppression of NLRP3 inflammasome and reducing cytokine production in mice. Immunopharmacol Immunotoxicol 2019; 41(3): 420-7.
31. Bacanli M, Başaran AA, Başaran N. The antioxidant and antigenotoxic properties of citrus phenolics limonene and naringin. Food Chem Toxicol 2015; 81: 160-70.


Protective Effect of Hydroalcoholic Extract of Ziziphora clinopodioides on Hepato-Renal Toxicity of Silver Nanoparticles in Male Rats: An Experimental Study


Milad Khazaie[6], Mehrdad Pooyanmehr[7], Ali Maleki[8], Samad Alimohammadi[9], Lida Haghnazari[10]


Received: 07/08/24       Sent for Revision: 17/09/24       Received Revised Manuscript: 09/10/24   Accepted: 13/10/24



Background and Objectives: Toxicological studies on silver nanoparticles (Ag-NPs) have great importance due to their extensive biomedical applications. Because of high antioxidant property of Ziziphora clinopodioides, the aim of this study was to investigate the protective effect of this plant against Ag-NPs-induced toxicity.
Materials and Methods: In this experimental study, 30 male rats weighing 200±20 g were divided into 5 groups of 6 which included the control group, the group receiving Ag-NPs with a dose of 200 ppm, the groups receiving the hydroalcoholic extract of Ziziphora clinopodioides with doses of 20, 60, and 180 mg/kg along with Ag-NPs (200 ppm). The compounds were administered orally once a day for 30 days. At the end of the treatment period, blood samples were collected and serum activity of alkaline phosphatase, alanine aminotransferase, aspartate aminotransferase, lactate dehydrogenase, and serum concentration of urea and creatinine were evaluated. Data were analyzed by one-way analysis of variance and Tukey’s post hoc test.
Results: The results indicated that administration of Ag-NPs significantly increased the serum activity of alkaline phosphatase, alanine aminotransferase, aspartate aminotransferase, lactate dehydrogenase, and serum concentration of urea and creatinine compared to the control group (p<0.05). These changes were improved during treatment with the extract of Ziziphora clinopodioides in different doses compared to the group receiving Ag-NPs (p<0.05).
Conclusion: Based on the results of the present study, the Ziziphora clinopodioides may be effective in preventing the toxicity of Ag-NPs.
Keywords: Silver nanoparticle, Ziziphora clinopodioides, Hepato-Renal toxicity, Rat

Funding: This study was funded by Razi University, Kermanshah, Iran.
Conflict of interest: None declared.
Ethical considerations: The Ethics Committee of Razi University approved the study (Code of ethics: 396-2-039).
Authors’ contributions:
- Conceptualization: Samad Alimohammadi, Mehrdad Pooyanmehr
- Methodology: Samad Alimohammadi, Mehrdad Pooyanmehr
- Data collection: Mehrdad Pooyanmehr, Milad Khazaie, Ali Maleki, Lida Haghnazari
- Formal analysis: Samad Alimohammadi, Mehrdad Pooyanmehr, Milad Khazaie
- Supervision: Samad Alimohammadi, Mehrdad Pooyanmehr
- Project administration: Samad Alimohammadi, Mehrdad Pooyanmehr
- Writing - original draft: Samad Alimohammadi
Citation: Khazaie M, Pooyanmehr M, Maleki A, Alimohammadi S, Haghnazari L. Protective Effect of Hydroalcoholic Extract of Ziziphora clinopodioides on Hepato-Renal Toxicity of Silver Nanoparticles in Male Rats: An Experimental Study. J Rafsanjan Univ Med Sci 2024; 23 (7): 578-88. [Farsi]
- Writing - review & editing: Samad Alimohammadi

 
[1]- دانش‌آموخته دکترای عمومی دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
[2]- استادیار، گروه علوم پایه و پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
[3]- استادیار، مرکز تحقیقات بیولوژی پزشکی، پژوهشکده فناوری سلامت، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران
[4]- (نویسنده مسئول) استادیار، گروه علوم پایه و پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
    تلفن: 38320041-083، پست الکترونیکی: S.alimohammadi@razi.ac.ir
[5]- دانشیار، گروه بیوشیمی بالینی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران
[6]- DVM Graduate, Faculty of Veterinary Medicine, Razi University, Kermanshah, Iran
[7]- Assistant Prof., Dept. of Basic Sciences and Pathobiology, Faculty of Veterinary Medicine, Razi University, Kermanshah, Iran
[8]- Assistant Prof., Medical Biology Research Center, Health Technology Research Institute, Kermanshah University of Medical Sciences, Kermanshah, Iran
[9]- Assistant Prof., Dept. of Basic Sciences and Pathobiology, Faculty of Veterinary Medicine, Razi University, Kermanshah, Iran
 ORCID: 0000-0001-7489-4578.
(Corresponding Author) Tel: (083) 38320041, E-mail: S.alimohammadi@razi.ac.ir
[10]- Associate Prof., Dept. of Clinical Biochemistry, School of Medicine, Kermanshah University of Medical Sciences, Kermanshah, Iran
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: فيزيولوژي
دریافت: 1403/5/13 | پذیرش: 1403/7/22 | انتشار: 1403/9/10

فهرست منابع
1. Nie P, Zhao Y, Xu H. Synthesis, applications, toxicity and toxicity mechanisms of silver nanoparticles: A review. Ecotoxicol Environ Saf 2023; 253: 114636.
2. Fewtrell L, Majuru B, Hunter PR. A re-assessment of the safety of silver in household water treatment: rapid systematic review of mammalian in vivo genotoxicity studies. Environ Health 2017; 16(1): 66.
3. Ferdous Z, Nemmar A. Health impact of silver nanoparticles: a review of the biodistribution and toxicity following various routes of exposure. Int J Mol Sci 2020; 21(7): 2375.
4. Naguib M, Mahmoud UM, Mekkawy IA, Sayed AE. Hepatotoxic effects of silver nanoparticles on Clarias gariepinus; Biochemical, histopathological, and histochemical studies. Toxicol Reports 2020; 7: 133-41.
5. Albrahim T. Silver nanoparticles-induced nephrotoxicity in rats: the protective role of red beetroot (Beta vulgaris) juice. Environ Sci Pollut Res 2020; 27: 38871-80.
6. Elblehi SS, Abd El-Maksoud EM, Aldhahrani A, Alotaibi SS, Ghamry HI, Elgendy SA, et al. Quercetin abrogates oxidative neurotoxicity induced by silver nanoparticles in Wistar rats. Life 2022; 12(4): 578.
7. Shamohammadi M, Pooyanmehr M, Maleki A, Alimohammadi S. Evaluation of protective and immunomodulatory effects of hydroalcoholic extract of Scrophularia striata on silver nanoparticle-induced toxicity in male rats. Arch Adv Biosci 2021; 12(1): 7-17.
8. Paydar E, Alimohammadi S. Anxiolytic-like effect of hydroalcoholic extract of Cynara scolymus L. in male mice: an experimental study. J Rafsanjan Univ Med Sci 2023; 22(8): 805-16. [Farsi].
9. Mohammadifard F, Alimohammadi S. Chemical composition and role of opioidergic system in antinociceptive effect of Ziziphora clinopodioides essential oil. Basic Clin Neurosci 2018; 9(5): 357-66.
10. Ahmadi A, Gandomi H, Derakhshandeh A, Misaghi A, Noori N. Phytochemical composition and in vitro safety evaluation of Ziziphora clinopodioides Lam. ethanolic extract: Cytotoxicity, genotoxicity and mutagenicity assessment. J Ethnopharmacol 2021; 266: 113428.
11. Shahbazi Y. Chemical compositions, antioxidant and antimicrobial properties of Ziziphora clinopodioides Lam. essential oils collected from different parts of Iran. J Food Sci Technol 2017; 54(11): 3491-503.
12. Amini-Shirazi N, Hoseini A, Ranjbar A, Mohammadirad A, Khoshakhlagh P, Yasa N, et al. Inhibition of tumor necrosis factor and nitrosative/oxidative stresses by Ziziphora clinopoides (Kahlioti); a molecular mechanism of protection against dextran sodium sulfate-induced colitis in mice. Toxicol Mech Methods 2009; 19(2): 183-9.
13. Bolbol Haghighi N, Molzemi S, Goli Sh, Mohammad Sadeghi H, Aminian M. The effect of hydroalcoholic extract of Ziziphora clinopodioides Lam on testicular damage caused by diabetes mellitus in male rats. J Babol Univ Med Sci 2017; 19(12): 43-9. [Farsi].
14. Abdolsamad Halaf IA, Tehranipour M, Mahmodzadeh Akharat H. Effect of aqueous and alcoholic extracts of Ziziphora clinopodioides on apoptosis and alteration of caspase-3 and caspase-9 gene expression in anterior horn neurons of the spinal cord after sciatic nerve compression in male rats. J Birjand Univ Med Sci 2021; 28(3): 222-35. [Farsi].
15. Sedighi S, Tehranipour M, Vaezi G, Vida Hojati V, Hashemi-Moghaddam H. The effect of hydroalcoholic extract of Ziziphora clinopodioides L. on spatial memory and neuronal density of hippocampal CA1 region in rats with sporadic Alzheimer's disease. Avicenna J Phytomed 2019; 9(4): 362-73.
16. Tiwari R, Singh RD, Khan H, Gangopadhyay S, Mittal S, Singh V, et al. Oral subchronic exposure to silver nanoparticles causes renal damage through apoptotic impairment and necrotic cell death. Nanotoxicology 2017; 11(5): 671-86.
17. Abyari M, Alimohammadi S, Pooyanmehr M, Ghashghaii A, Maleki A. Assessment of the effects of cyclooxygenase inhibitors on the immune status following surgery in adult male rats. Qom Univ Med Sci J 2021; 15(2):110-9. [Farsi].
18. Bahrami E, Pooyanmehr M, Maleki A, Alimohammadi S. The protective effects of Allium saralicum aqueous extract on blood glucose and some related biochemical factors in alloxan-induced diabetic male rats: an experimental study. J Rafsanjan Univ Med Sci 2022; 21(7):729-40. [Farsi].
19. Khan Y, Sadia H, Ali Shah SZ, Khan MN, Shah AA, Ullah N, et al. Classification, synthetic, and characterization approaches to nanoparticles, and their applications in various fields of nanotechnology: A review. Catalysts 2022; 12(11): 1386.
20. Magdy G, Aboelkassim E, Abd Elhaleem SM, Belal F. A comprehensive review on silver nanoparticles: synthesis approaches, characterization techniques, and recent pharmaceutical, environmental, and antimicrobial applications. Microchem J 2024; 196: 109615.
21. Ferdous Z, Nemmar A. Health impact of silver nanoparticles: a review of the biodistribution and toxicity following various routes of exposure. Int J Mol Sci 2020; 21(7): 2375.
22. Shehata AM, Salem FM, El-Saied EM, Abd El-Rahman SS, Mahmoud MY, Noshy PA. Evaluation of the ameliorative effect of zinc nanoparticles against silver nanoparticle-induced toxicity in liver and kidney of rats. Biol Trace Elem Res 2022; 200: 1201-11.
23. Ji JH, Jung JH, Kim SS, Yoon JU, Park JD, Choi BS, et al. Twenty-eight-day inhalation toxicity study of silver nanoparticles in Sprague-Dawley rats. Inhal Toxicol 2007; 19(10): 857-71.
24. Lee SH, Jun BH. Silver nanoparticles: synthesis and application for nanomedicine. Int J Mol Sci 2019; 20: 865.
25. Ansar S, Alshehri SM, Abudawood M, Hamed SS, Ahamad T. Antioxidant and hepatoprotective role of selenium against silver nanoparticles. Int J Nanomed 2017; 12: 7789-97.
26. Kim WY, Kim J, Park JD, Ryu HY, Yu IJ. Histological study of gender differences in accumulation of silver nanoparticles in kidneys of Fischer 344 rats. J Toxicol Environ Health Part A 2009; 72: 1279-84.
27. Alarifi S, Ali D, Gurabi MAA, Alkahtani S. Determination of nephrotoxicity and genotoxic potential of silver nanoparticles in Swiss albino mice. Toxicol Environ Chem 2017; 99(2):294-301.
28. Chen R, Zhao L, Bai R, Liu Y, Han L, Xu Z, et al. Silver nanoparticles induced oxidative and endoplasmic reticulum stresses in mouse tissues: implications for the development of acute toxicity after intravenous administration. Toxicol Res 2016; 5(2): 602-8.
29. Ranjbar A, Firozian F, Soleimani Asl S, Ghasemi H, Taheri Azandariani M, Larki A, et al. Nitrosative DNA damage after sub-chronic exposure to silver nanoparticle induces stress nephrotoxicity in rat kidney. Toxin Rev 2018; 37(4): 327-33.
30. Yang Q, Luo J, Lv H, Wen T, Shi B, Liu X, et al. Pulegone inhibits inflammation via suppression of NLRP3 inflammasome and reducing cytokine production in mice. Immunopharmacol Immunotoxicol 2019; 41(3): 420-7.
31. Bacanli M, Başaran AA, Başaran N. The antioxidant and antigenotoxic properties of citrus phenolics limonene and naringin. Food Chem Toxicol 2015; 81: 160-70.

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2024 CC BY-NC 4.0 | Journal of Rafsanjan University of Medical Sciences

Designed & Developed by : Yektaweb