جلد 22، شماره 9 - ( 9-1402 )
جلد 22 شماره 9 صفحات 962-947 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Ethics code: IR.AUSMT.REC.1400.03
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Masoudi M, Azizi H, Gholami D, Khaki A. Investigation of ZBTB16 Gene Expression by Bioinformatics Analysis and Immunocytochemistry and Immunohistochemistry Methods in Embryonic Cells Derived From Spermatogonial Stem Cells of Mouse Testis: A Laboratory Study. JRUMS 2023; 22 (9) :947-962
URL: http://journal.rums.ac.ir/article-1-7042-fa.html
URL: http://journal.rums.ac.ir/article-1-7042-fa.html
مسعودی مهلا، عزیزی حسین، غلامی داریوش، خاکی امیر. بررسی بیان ژن ZBTB16 با تجزیه و تحلیل بیوانفورماتیک و روش‌های ایمونوسیتوشیمی و ایمونوهیستوشیمی در سلول‌های بنیادی شبه جنینی برگرفته شده از سلول‌های بنیادی اسپرماتوگونیال بیضه موش: یک مطالعه آزمایشگاهی. مجله دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان. 1402; 22 (9) :947-962
دانشگاه فناوریهای نوین آمل
چکیده: (1021 مشاهده)
زمینه و هدف: سلول‌های بنیادی اسپرماتوگونیال (Spermatogonia stem cells; SSCs) می‌توانند سلول‌های بنیادی شبه جنینی (Eembryonic stem-like; ES-Like) را تولید کنند که هر دو دارای پتانسیل سلول‌های بنیادی پرتوان می‌باشند. ژن ZBTB16 (Zinc Finger and BTB Domain Containing 16) عملکردهای مختلفی در مسیر سیگنالینگ، تنظیم تمایز و رشد سلولی دارد. هدف از پژوهش حاضر شناسایی مسیرهای سیگنالینگ مرتبط با ژن ZBTB16 با روش‌های بیوانفورماتیک و بررسی میزان بیان این ژن در SSCs و ES-Like می‌باشد.
مواد و روش‌ها: در این مطالعه آزمایشگاهی، ابتدا 100 ژن دارای ارتباط و اتصال با ZBTB16 از پایگاه پروتئینی استخراج و توسط نرم‌افزارهای مرتبط آنالیز شدند. در ادامه، سلول‌های ES-Like از SSCs بیضه موش استخراج و کشت داده شدند. سپس با انجام رنگ‌آمیزی ایمونوسیتوشیمی و ایمونوهیستوشیمی بیان ZBTB16 در سلول‌های ES-Like و SSCs بررسی شد.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که بیان ZBTB16 در جمعیت تمایز نیافته SSCs و ES-Like به وضوح دیده می‌شود. هم‌چنین، بیان شد که در صورت حذف ZBTB16 از شبکه ژنی می‌توان در برخی از مسیرهای سیگنالینگ نامطلوب اختلال ایجاد کرد، زیرا ZBTB16 به‌عنوان یک فاکتور رونویسی خاص در غنی کردن مسیرهای خاصی دخالت دارد.
نتیجه‌گیری: یافته‌های تجربی می‌توانند از آنالیز رشد سلول‌های اسپرماتوگونیال در in vivo و in vitro حمایت کنند و روش‌های بیوانفورماتیک با شناسایی عملکردهای بیولوژیکی که ZBTB16 در تنظیم آن‌ها دخیل می‌باشد، نشان دادند که برای ضعیف کردن برخی مسیرهای نامطلوب می‌توان از ZBTB16 به عنوان ژن هدف استفاده نمود.
واژه‌های کلیدی: سلول‌های بنیادی اسپرماتوگونیال، سلول‌های بنیادی شبه جنینی، مسیر سیگنالینگ، ارتباط پروتئین-پروتئین، ZBTB16
مواد و روش‌ها: در این مطالعه آزمایشگاهی، ابتدا 100 ژن دارای ارتباط و اتصال با ZBTB16 از پایگاه پروتئینی استخراج و توسط نرم‌افزارهای مرتبط آنالیز شدند. در ادامه، سلول‌های ES-Like از SSCs بیضه موش استخراج و کشت داده شدند. سپس با انجام رنگ‌آمیزی ایمونوسیتوشیمی و ایمونوهیستوشیمی بیان ZBTB16 در سلول‌های ES-Like و SSCs بررسی شد.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که بیان ZBTB16 در جمعیت تمایز نیافته SSCs و ES-Like به وضوح دیده می‌شود. هم‌چنین، بیان شد که در صورت حذف ZBTB16 از شبکه ژنی می‌توان در برخی از مسیرهای سیگنالینگ نامطلوب اختلال ایجاد کرد، زیرا ZBTB16 به‌عنوان یک فاکتور رونویسی خاص در غنی کردن مسیرهای خاصی دخالت دارد.
نتیجه‌گیری: یافته‌های تجربی می‌توانند از آنالیز رشد سلول‌های اسپرماتوگونیال در in vivo و in vitro حمایت کنند و روش‌های بیوانفورماتیک با شناسایی عملکردهای بیولوژیکی که ZBTB16 در تنظیم آن‌ها دخیل می‌باشد، نشان دادند که برای ضعیف کردن برخی مسیرهای نامطلوب می‌توان از ZBTB16 به عنوان ژن هدف استفاده نمود.
واژه‌های کلیدی: سلول‌های بنیادی اسپرماتوگونیال، سلول‌های بنیادی شبه جنینی، مسیر سیگنالینگ، ارتباط پروتئین-پروتئین، ZBTB16
واژه‌های کلیدی: سلول‌های بنیادی اسپرماتوگونیال، سلول‌های بنیادی شبه جنینی، مسیر سیگنالینگ، ارتباط پروتئین-پروتئین، ZBTB16
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
زيست شناسي
دریافت: 1402/4/8 | پذیرش: 1402/8/27 | انتشار: 1402/9/28
دریافت: 1402/4/8 | پذیرش: 1402/8/27 | انتشار: 1402/9/28
فهرست منابع
1. Azizi H, NiaziTabar A, Mohammadi A, Skutella T. Characterization of VASA gene expression in human cases with non-obstructive azoospermia and in sterile and fertile mice. Reproduction & Infertility 2021; 22(2): 85.
2. Wei BH, Hao SL, Yang WX. Regulation of spermatogonial stem cell self-renewal and proliferation in mammals 2022; 37: 825-38.
3. Azizi H, Asgari B, Skutella T. Pluripotency potential of embryonic stem cell-like cells derived from mouse testis. Cell Journal (Yakhteh) 2019; 21(3): 281.
4. Cannarella R, Condorelli RA, Mongioì LM, La Vignera S, Calogero AE. Molecular biology of spermatogenesis: novel targets of apparently idiopathic male infertility. molecular sciences 2020; 21(5): 1728.
5. Wang J, Zhang Y, Wei B, Zhou K, Xu L, Jin Y. A Pan-Cancer Analysis of the Prognostic Value and Immunological Role of Promyelocytic Leukemia Zinc Finger. Pharmaceutical Sciences 2022: 217-25.
6. Valdivia M, Castañeda‐Zegarra S, Lévano G, Lazo J, Reyes J, Bravo Z, et al. Spermatogonial stem cells identified by molecular expression of PLZF, integrin β1 and reactivity to Dolichos biflorus agglutinin in alpaca adult testes. Andrologia 2019; 51(6): e13283.
7. Azizi H, Hamidabadi HG, Skutella T. Differential proliferation effects after short-term cultivation of mouse spermatogonial stem cells on different feeder layers. Cell Journal (Yakhteh) 2019; 21(2): 186.
8. Azizi H, Conrad S, Hinz U, Asgari B, Nanus D, Peterziel H, et al. Derivation of pluripotent cells from mouse SSCs seems to be age dependent. Stem cells international 2016; 2016: 8216312.
9. Azizi H, Niazi Tabar A, Skutella T. Successful transplantation of spermatogonial stem cells into the seminiferous tubules of busulfan-treated mice. Reproductive Health 2021; 18: 1-9.
10. Azizi H, Koruji M, Skutella T. Comparison of PLZF gene expression between pluripotent stem cells and testicular germ cells. Cell Journal (Yakhteh) 2020; 22(1): 60.
11. Sharma S, Wistuba J, Pock T, Schlatt S, Neuhaus N. Spermatogonial stem cells: updates from specification to clinical relevance. Human reproduction update 2019; 25(3): 275-97.
12. Li N, Shi T, Zhang M, He Y, Feng J, Mei Z, et al. PLZF promotes the development of asthma tolerance via affecting memory phenotypes of immune cells. International Immunopharmacology 2023; 114: 109559.
13. Hashemi Karoii D, Azizi H. A review of protein-protein interaction and signaling pathway of Vimentin in cell regulation, morphology and cell differentiation in normal cells. Receptors and Signal Transduction 2022; 42(5): 512-20.
14. Karoii DH, Azizi H, Amirian M. Signaling pathways and protein–protein interaction of vimentin in invasive and migration cells: A review. Cellular Reprogramming 2022; 24(4): 165-74.
15. Hashemi Karoii D, Azizi H, Skutella T. Microarray and in silico analysis of DNA repair genes between human testis of patients with nonobstructive azoospermia and normal cells. Cell Biochemistry and Function 2022; 40(8): 865-79.
16. Luo K, Wang Z, Zhuang K, Yuan S, Liu F, Liu A. Suberoylanilide hydroxamic acid suppresses axonal damage and neurological dysfunction after subarachnoid hemorrhage via the HDAC1/HSP70/TDP-43 axis. Experimental & Molecular Medicine 2022; 54(9): 1423-33.
17. Yan Y, Tao Y, Cao Z, Lu S, Xu P, Qiang J. The Effect of Knocked-Down Anti-Müllerian Hormone mRNA on Reproductive Characters of Male Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) through Inhibition of the TGF-Beta Signaling Pathway. Fishes 2022; 7(5): 299.
18. Khaleel Ba, Lunenfeld E, Kapelushnik J, Huleihel M. Effect of Chemotherapy Cytarabine and Acute Myeloid Leukemia on the Development of Spermatogenesis at the Adult Age of Immature Treated Mice. Molecular Sciences 2022; 23(7): 4013.
19. Dilower I, Niloy AJ, Kumar V, Kothari A, Lee EB, Rumi M. Hedgehog Signaling in Gonadal Development and Function. Cells 2023; 12(3): 358.
20. Terrell A. Regulation of Spermatogenesis by Notch Signaling. 2023; 129.
21. Edenfield RC, Easley IV CA. Implications of testicular ACE2 and the renin–angiotensin system for SARS-CoV-2 on testis function. Nature Reviews Urology 2022; 19(2): 116-27.
22. Sadler AJ, Rossello FJ, Yu L, Deane JA, Yuan X, Wang D, et al. BTB-ZF transcriptional regulator PLZF modifies chromatin to restrain inflammatory signaling programs. Proceedings of the National Academy of Sciences 2015; 112(5): 1535-40.
23. Shen H, Zhan M, Zhang Y, Huang S, Xu S, Huang X, et al. PLZF inhibits proliferation and metastasis of gallbladder cancer by regulating IFIT2. Cell death & disease 2018; 9(2): 71.
24. Hu S, Chen Y, Liu L, Yin X, Yang Y, Tang L. PLZF and PLZF-MAPK10 can predict the prognosis of postoperative patients with hepatocellular carcinoma. Clinical and Experimental Pathology 2020; 13(12): 3158.
25. Aballa L, Chraa M, Louhab N, Kissani N. Extensive anaplastic multi-centric ependymoma in a young adult: case report and literature review. The Egyptian Journal of Neurology, Psychiatry and Neurosurgery 2023; 59(1): 67.
26. Hashemi Karoii D, Azizi H. OCT4 protein and gene expression analysis in the differentiation of spermatogonia stem cells into neurons by immunohistochemistry, immunocytochemistry, and bioinformatics analysis. Stem Cell Reviews and Reports 2023: 1-17.
27. Niazi Tabar A, Azizi H, Hashemi Karoii D, Skutella T. Testicular Localization and Potential Function of Vimentin Positive Cells during Spermatogonial Differentiation Stages. Animals 2022; 12(3): 268.
28. Azizi H, Hashemi Karoii D, Skutella T. Whole Exome Sequencing and In Silico Analysis of Human Sertoli in Patients with Non-Obstructive Azoospermia. Molecular Sciences 2022; 23(20): 12570.
29. Hashemi Karoii D, Azizi H, Skutella T. Altered G-Protein Transduction Protein Gene Expression in the Testis of Infertile Patients with Nonobstructive Azoospermia. DNA and Cell Biology 2023; 42: 1-21.
30.
31.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
