جلد 23، شماره 7 - ( 8-1403 )
جلد 23 شماره 7 صفحات 621-605 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Ethics code: IR.MUMS.MEDICAL.REC.1398.239
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Fanoudi S, Hoseini A. Protective Effect of Hydroalcoholic Extract of Cordia Myxa Fruit in Decreasing H2O2-Induced Toxicity in Bovine Aortic Endothelial Cells (BAE-1): A Laboratory Study. JRUMS 2024; 23 (7) :605-621
URL: http://journal.rums.ac.ir/article-1-7402-fa.html
URL: http://journal.rums.ac.ir/article-1-7402-fa.html
فنودی سحر، حسینی آذر. اثر محافظتی عصاره آبی-الکلی میوه گیاه سپستان در کاهش سمیت ناشی از پراکسید هیدروژن در سلول‌های اندوتلیال آئورت گاو (BAE-1):
یک مطالعه آزمایشگاهی. مجله دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان. 1403; 23 (7) :605-621
دانشگاه علوم پزشکی مشهد
چکیده: (46 مشاهده)
زمینه و هدف: با توجه به اثرات منفی استرس اکسیداتیو در پاتوفیزیولوژی بیماری‌های قلبی و عروقی، استفاده از آنتی‌اکسیدان‌ها مانند گیاهان دارویی میتواند به کاهش عوارض کمک کند. این مطالعه با هدف تعیین اثر محافظتی گیاه سپستان در برابر استرس اکسیداتیو ناشی از پراکسید هیدروژن (H2O2) در سلول‌های اندوتلیوم آئورت جدا شده از گاو (Bovine Aortic Endothelial; BAE-1) انجام شد.
مواد و روش‌ها: در این مطالعه آزمایشگاهی، ابتدا عصاره آبی-الکلی از میوه گیاه سپستان تهیه شد. سلول‌های BAE-1 به مدت 24 ساعت در مجاورت غلظت‌های مختلف عصاره (200-25 میکروگرم در میلی‌لیتر) قرار گرفتند، سپس H2O2 (200 میکرومولار) اضافه شد و پس از نیمساعت تست‌های مختلف شامل زنده‌مانی سلولها، میزان آپوپتوز سلولی به روش فلوسایتومتری، بررسی پراکسیداسیون لیپیدی با سنجش مالون‌دی‌آلدهید و بررسی تولید رادیکال‌های آزاد با پروب دیکلرودیفلئورسیندی استات (Dichlorodifluorescein diacetate; DCFDA) انجام گردید. داده‌ها با استفاده از آنالیز واریانس یک‌طرفه و آزمون تعقیبی Tukey تجزیه و تحلیل شدند.
یافته‌ها: غلظت‌های مختلف عصاره میوه سپستان بهصورت وابسته به دوز میزان تولید گونههای فعال اکسیژن و مالون‌دی‌آلدهید ناشی از سمیت H2O2 را به صورت معنی‌دار نسبت به گروه H2O2 کاهش داد (05/0>P). همچنین، پیشتیمار سلولها با عصاره میوه سپستان به صورت وابسته به دوز باعث کاهش معنی‌دار میزان آپوپتوز نسبت به گروه پراکسید هیدروژن شد (010/0>P).
نتیجه‌گیری: بر اساس یافته‌های پژوهش حاضر، به نظر میرسد استفاده از عصاره آبی-الکلی میوه سپستان میتواند سبب کاهش آسیب اکسیداتیو و سمیت سلولی ناشی از پراکسید هیدروژن در سلول‌های BAE-1 شود.
واژههای کلیدی: سپستان، پراکسید هیدروژن، استرس اکسیداتیو، سلول اندوتلیال
مواد و روش‌ها: در این مطالعه آزمایشگاهی، ابتدا عصاره آبی-الکلی از میوه گیاه سپستان تهیه شد. سلول‌های BAE-1 به مدت 24 ساعت در مجاورت غلظت‌های مختلف عصاره (200-25 میکروگرم در میلی‌لیتر) قرار گرفتند، سپس H2O2 (200 میکرومولار) اضافه شد و پس از نیمساعت تست‌های مختلف شامل زنده‌مانی سلولها، میزان آپوپتوز سلولی به روش فلوسایتومتری، بررسی پراکسیداسیون لیپیدی با سنجش مالون‌دی‌آلدهید و بررسی تولید رادیکال‌های آزاد با پروب دیکلرودیفلئورسیندی استات (Dichlorodifluorescein diacetate; DCFDA) انجام گردید. داده‌ها با استفاده از آنالیز واریانس یک‌طرفه و آزمون تعقیبی Tukey تجزیه و تحلیل شدند.
یافته‌ها: غلظت‌های مختلف عصاره میوه سپستان بهصورت وابسته به دوز میزان تولید گونههای فعال اکسیژن و مالون‌دی‌آلدهید ناشی از سمیت H2O2 را به صورت معنی‌دار نسبت به گروه H2O2 کاهش داد (05/0>P). همچنین، پیشتیمار سلولها با عصاره میوه سپستان به صورت وابسته به دوز باعث کاهش معنی‌دار میزان آپوپتوز نسبت به گروه پراکسید هیدروژن شد (010/0>P).
نتیجه‌گیری: بر اساس یافته‌های پژوهش حاضر، به نظر میرسد استفاده از عصاره آبی-الکلی میوه سپستان میتواند سبب کاهش آسیب اکسیداتیو و سمیت سلولی ناشی از پراکسید هیدروژن در سلول‌های BAE-1 شود.
واژههای کلیدی: سپستان، پراکسید هیدروژن، استرس اکسیداتیو، سلول اندوتلیال
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
فارماكولوژي
دریافت: 1403/3/8 | پذیرش: 1403/7/29 | انتشار: 1403/9/10
دریافت: 1403/3/8 | پذیرش: 1403/7/29 | انتشار: 1403/9/10
فهرست منابع
1. Favero G, Paganelli C, Buffoli B, Rodella LF, Rezzani R. Endothelium and its alterations in cardiovascular diseases: life style intervention. Biomed Res International 2014; 2014.
2. Maack C, Dabew ER, Hohl M, Schäfers H-J, Böhm M. Endogenous activation of mitochondrial KATP channels protects human failing myocardium from hydroxyl radical–induced stunning. Circulation Res 2009; 105(8): 811-7.
3. K Jain A, K Mehra N, K Swarnakar N. Role of antioxidants for the treatment of cardiovascular diseases: challenges and opportunities. Current Pharmaceutical Design 2015; 21(30): 4441-55.
4. Huang H, Geng Q, Yao H, Shen Z, Wu Z, Miao X, et al. Protective effect of scutellarin on myocardial infarction induced by isoprenaline in rats. Iranian J Basic Med Sci 2018; 21(3): 267.
5. Cai H. Hydrogen peroxide regulation of endothelial function: origins, mechanisms, and consequences. Cardiovascular Res 2005; 68(1): 26-36.
6. Rahiman N, Akaberi M, Sahebkar A, Emami SA, Tayarani-Najaran Z. Protective effects of saffron and its active components against oxidative stress and apoptosis in endothelial cells. Microvascular Res 2018; 118: 82-9.
7. Wongpradabchai S, Chularojmontri L, Phornchirasilp S, Wattanapitayakul SK. Protective effect of Phyllanthus emblica fruit extract against hydrogen peroxide-induced endothelial cell death. J Med Assoc Thai 2013; 96(Suppl 1): 40-8.
8. Safaeian L, Sajjadi SE, Javanmard SH, Montazeri H, Samani F. Protective effect of Melissa officinalis extract against H2O2-induced oxidative stress in human vascular endothelial cells. Res Pharmaceutical Sci 2016; 11(5): 383.
9. Ciampi F, Gandy J, Ciliberti MG, Sevi A, Albenzio M, Santillo A. Pomegranate (Punica granatum) By-Product Extract Influences the Oxylipids Profile in Primary Bovine Aortic Endothelial Cells in a Model of Oxidative Stress. Frontiers in Animal Sci 2022; 3: 837279.
10. Mollazadeh H, Hosseinzadeh H. The protective effect of Nigella sativa against liver injury: a review. Iranian J Basic Med Sci 2014; 17(12): 958.
11. Al-Musawi MH, Ibrahim KM, Albukhaty S. In vitro study of antioxidant, antibacterial, and cytotoxicity properties of Cordia myxa fruit extract. Iranian J Microbiol 2022; 14(1): 97.
12. El-Massry KF, Farouk A, Mahmoud KF, El-Ghorab AH, Musa A, Mostafa EM, et al. Chemical characteristics and targeted encapsulated Cordia myxa fruits extracts nanoparticles for antioxidant and cytotoxicity potentials. Saudi J Biological Sci 2021; 28(9): 5349-58.
13. Mohtasham N, Zarei Ahmadi A, Alisamir M, Shakiba Maram N, Larki A. Preparation of Sepestan Anti-cough Syrup and Comparison of its Effectiveness With Diphenhydramine Syrup in Treating Cough in Children With Upper Respiratory Tract Infection: A Double-blind Randomized Clinical Trial. Jundishapur Sci Med J 2022; 21(4): 574-85.
14. Al-Snafi AE. The Pharmacological and therapeutic importance of Cordia myxa-A review. IOSR J Pharmacy 2016; 6(6): 47-57.
15. Al-Khafaji SA, Alsaadawi MA, Al-Yasari AM, Al-Saadawe MA. Article review: Cordia myxa L.: The gift of the nature, A Review. Basrah J Agricultural Sci 2021; 34(2): 267-77.
16. Ashour OM, Abdel-Naim AB, Abdallah HM, Nagy AA, Mohamadin AM, Abdel-Sattar EA. Evaluation of the potential cardioprotective activity of some Saudi plants against doxorubicin toxicity. Zeitschrift Für Naturforschung C 2012; 67(5-6): 297-307.
17. Chang X, Zhang T, Zhang W, Zhao Z, Sun J. Natural drugs as a treatment strategy for cardiovascular disease through the regulation of oxidative stress. Oxidative Med and Cellular Longevity 2020; 2020(1): 5430407.
18. Zhang Q-W, Lin L-G, Ye W-C. Techniques for extraction and isolation of natural products: A comprehensive review. Chinese Med 2018; 13: 1-26.
19. Hooshmand S, Mahdinezhad MR, Taraz Jamshidi S, Soukhtanloo M, Mirzavi F, Iranshahi M, et al. Morus nigra L. extract prolongs survival of rats with hepatocellular carcinoma. Phytotherapy Res 2021; 35(6): 3365-76.
20. Bhaigyabati T, Devi PG, Bag G. Total flavonoid content and antioxidant activity of aqueous rhizome extract of three hedychium species of Manipur valley. Res J Pharmaceutical Biological and Chemical Sci 2014; 5(5): 970-6.
21. Baba SA, Malik SA. Determination of total phenolic and flavonoid content, antimicrobial and antioxidant activity of a root extract of Arisaema jacquemontii Blume. J Taibah Univ for Sci 2015; 9(4): 449-54.
22. Da Violante G, Zerrouk N, Richard I, Provot G, Chaumeil JC, Arnaud P. Evaluation of the cytotoxicity effect of dimethyl sulfoxide (DMSO) on Caco2/TC7 colon tumor cell cultures. Biological and Pharmaceutical Bulletin 2002; 25(12): 1600-3.
23. Alavi MS, Fanoudi S, Hosseini A, Jalili-Nik M, Bagheri A, Sadeghnia HR. Everolimus attenuates glutamate-induced PC12 cells death. International J Neuroscience 2023; 133(4): 457-66.
24. Hosseini A, Rajabian A. Protective effect of Rheum turkestanikum root against doxorubicin-induced toxicity in H9c2 cells. Revista Brasileira de Farmacognosia 2016; 26: 347-51.
25. Ghani MA, Barril C, Bedgood Jr DR, Prenzler PD. Measurement of antioxidant activity with the thiobarbituric acid reactive substances assay. Food Chemistry 2017; 230: 195-207.
26. Ghorbani A, Sadeghnia HR, Asadpour E. Mechanism of protective effect of lettuce against glucose/serum deprivation-induced neurotoxicity. Nutritional Neuroscience 2015; 18(3): 103-9.
27. Riccardi C, Nicoletti I. Analysis of apoptosis by propidium iodide staining and flow cytometry. Nature Protocols 2006; 1(3): 1458-61.
28. Sadeghnia HR, Ghorbani Hesari T, Mortazavian SM, Mousavi SH, Tayarani-Najaran Z, Ghorbani A. Viola tricolor induces apoptosis in cancer cells and exhibits antiangiogenic activity on chicken chorioallantoic membrane. BioMed Res Int 2014; 2014.
29. Yu M, Gouvinhas I, Rocha J, Barros AI. Phytochemical and antioxidant analysis of medicinal and food plants towards bioactive food and pharmaceutical resources. Scientific Reports 2021; 11(1): 10041.
30. Thomson MJ, Puntmann V, Kaski J-C. Atherosclerosis and oxidant stress: the end of the road for antioxidant vitamin treatment?. Cardiovascular Drugs and Therapy 2007; 21: 195-210.
31. Liu L-N, Mei Q-B, Liu L, Zhang F, Liu Z-G, Wang Z-P, et al. Protective effects of Rheum tanguticum polysaccharide against hydrogen peroxide-induced intestinal epithelial cell injury. World J Gastroenterology: WJG 2005; 11(10): 1503.
32. Shen Y, Shen Z, Li P, Chen Z, Wei B, Liu D, et al. Protective activity of Malus doumeri leaf extract on H2O2-induced oxidative injury in H9C2 rat cardiomyocytes. Frontiers in Cardiovascular Med 2022; 9: 1005306.
33. Keshani-Dokht S, Emam-Djomeh Z, Yarmand M-S, Fathi M. Extraction, chemical composition, rheological behavior, antioxidant activity and functional properties of Cordia myxa mucilage. Int J Biol Macromolecules 2018; 118: 485-93.
34. Afzal M, Obuekwe C, Khan A, BarakatΩ H. Antioxidant Activity of Cordia Myxa L. and Its Hepatoprotective Potential. Electronic J Environmental, Agricultural and Food Chemistry 2007; 6(6).
35. Singh R, Lawania RD, Mishra A, Gupta R. Role of Cordia dichotoma seeds and leaves extract in degenerative disorders. Int J Pharm Sci Rev Res 2010; 2(1): 21-4.
36. Almosa AHAS. Investigation of Anti-Bacterial, Antioxidant (Peroxynitrite scavenging and Hydroxyl radical scavenging) Activity of Cordia myxa and Screening of Its Functional Groups Using Fourier Transform Infrared Spectroscopy Technique. Clinical Images and Case Reports 2024; 2(7): 7-14.
37. Parween T, Jan S, Mahmooduzzafar S, Fatma T, Siddiqui ZH. Selective effect of pesticides on plant—A review. Critical Reviews in Food Sci and Nutrition 2016; 56(1): 160-79.
38. Mittler R. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trends in Plant Sci 2002; 7(9): 405-10.
39. Rafieipour F, Hadipour E, Emami SA, Asili J, Tayarani-Najaran Z. Safranal protects against beta-amyloid peptide-induced cell toxicity in PC12 cells via MAPK and PI3 K pathways. Metabolic Brain Disease 2019; 34: 165-72.
40. Afzal M, Obuekwe C, Khan A, Barakat H. Antioxidant activity of Cordia myxa L. and its hepatoprotective potential. Electronic J Environmental, Agricultural and Food Chemistry 2007; 6(8): 2236-42.
41. Al-Awadi FM, Srikumar T, Anim J, Khan I. Antiinflammatory effects of Cordia myxa fruit on experimentally induced colitis in rats. Nutrition 2001; 17(5): 391-6.
42. Lovrić J, Mesić M, Macan M, Koprivanac M, Kelava M, Bradamante V. Measurement of malondialdehyde (MDA) level in rat plasma after simvastatin treatment using two different analytical methods. Periodicum Biol 2008; 110(1): 63-8.
43. Inas Z, Hala A, Gehan HH. Gastroprotective effect of Cordia myxa L. fruit extract against indomethacin-induced gastric ulceration in rats. Life Sci J 2011; 8(3): 433-45.
44. Thirupathi K, Kumar SS, Goverdhan P, Ravikumar B, Krishna D, Mohan GK. Hepatoprotective action of Cordia dichotoma against carbon tetrachloride induced liver injury in rats. Nigerian J Nat Products and Med 2007; 11: 37-40.
45. Zhou X, Yuan D, Wang M, He P. H2O2-induced endothelial NO production contributes to vascular cell apoptosis and increased permeability in rat venules. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology 2013; 304(1): H82-H93.
46. Kondo-Kawai A, Sakai T, Terao J, Mukai R. Suppressive effects of quercetin on hydrogen peroxide-induced caveolin-1 phosphorylation in endothelial cells. Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition 2021; 69(1): 28-36.
47. Qu W, Fan L, Kim Y-c, Ishikawa S, Iguchi-Ariga SM, Pu X-P, et al. Kaempferol derivatives prevent oxidative stress–induced cell death in a DJ-1–dependent manner. J Pharmacological Sci 2009; 110(2): 191-200.
48. Crispo JA, Piché M, Ansell DR, Eibl JK, Tai IT, Kumar A, et al. Protective effects of methyl gallate on H2O2-induced apoptosis in PC12 cells. Biochemical and Biophysical Res Communications 20; 393(4): 773-8.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
