جلد 22، شماره 7 - ( 8-1402 )
جلد 22 شماره 7 صفحات 776-769 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Ethics code: IR.IAU.PIAU.REC.1400.009
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Madani F, Kazem Zadeh Y. The Effect of 8 Weeks of Aerobic Exercise Along with Nano-Curcumin on the Expression of Atrogin-1 and Murf-1 Genes in Soleus Muscle of Male Wistar Rat:
A Short Report. JRUMS 2023; 22 (7) :769-776
URL: http://journal.rums.ac.ir/article-1-6954-fa.html
URL: http://journal.rums.ac.ir/article-1-6954-fa.html
مدنی فاطمه، کاظم زاده یاسر. تأثیر 8 هفته تمرین هوازی به همراه مصرف نانوکورکومین بر بیان ژنهای Atrogin-1 وMurf-1 در عضله نعلی موش‌های صحرایی نر نژاد ویستار:
یک گزارش کوتاه. مجله دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان. 1402; 22 (7) :769-776
دانشکده تربیت بدنی دانشگاه آزاد اسلامی, واحد اسلامشهر, اسلامشهر, ایران
چکیده: (629 مشاهده)
زمینه و هدف: پژوهش حاضر با هدف تعیین تأثیر هشت هفته مصرف نانوکورکومین و تمرین هوازی بر بیان ژنهای Atrogin-1 و Murf-1 در عضله نعلی موش صحرایی نر نژاد ویستار انجام شد.
مواد و روش ها: در این مطالعه تجربی، از 32 سر موش صحرایی استفاده شد. تمرینات ورزشی 5 جلسه در هفته انجام شد و مکملدهی نیز (80 میلیگرم بر کیلوگرم) به موش‌ها داده شد. از تکنیک Real-time PCR برای سنجش بیان ژن و جهت تجزیه و تحلیل دادهها از آنالیز واریانس دوطرفه استفاده شد.
یافته ها: نتایج نشان داد که با انجام تمرین هوازی میانگین بیان ژنهای Murf-1 و Atrogin-1 به طور معنیداری کاهش یافت (05/0>P). همچنین، مصرف مکمل نانوکورکومین هم منجر به کاهش میانگین بیان ژنهای فوق شد (05/0>P).
نتیجهگیری: مصرف مکمل نانوکورکومین و تمرینات هوازی هر کدام به تنهایی منجر به کاهش بیان ژنهای Atrogin-1 و Murf-1 شدند ولی اثر متقابل آن‌ها بر بیان آتروژنها معنیدار نبود.
واژه های کلیدی: تمرین هوازی، نانوکورکومین، Murf-1، Atrogin-1، موش صحرایی
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
تربيت بدني
دریافت: 1402/2/5 | پذیرش: 1402/7/22 | انتشار: 1402/8/28
دریافت: 1402/2/5 | پذیرش: 1402/7/22 | انتشار: 1402/8/28
فهرست منابع
1. Hardy EJ, Deane CS, Lund JN, Phillips BE. Loss of muscle mass in the immediate post-operative period is associated with inadequate dietary protein and energy intake. Eur J Clin Nutr 2023; 77(4): 503-5.
2. Theadom A, Rodrigues M, Roxburgh R, Balalla S, Higgins C, Bhattacharjee R, et al. Prevalence of muscular dystrophies: a systematic literature review. Neuroepidemiology 2015; 43(3-4): 259-68.
3. Wang W, Li M, Chen Z, Xu L, Chang M, Wang K, et al. Biogenesis and function of extracellular vesicles in pathophysiological processes of skeletal muscle atrophy. Biochemical pharmacology 2022; 198: 114954.
4. Bodine SC, Latres E, Baumhueter S, Lai VK, Nunez L, Clarke BA, et al. Identification of ubiquitin ligases required for skeletal muscle atrophy. Science 2001; 294(5547): 1704-8.
5. Vargas-Mendoza N, Madrigal-Santillán E, Álvarez-González I, Madrigal-Bujaidar E, Anguiano-Robledo L, Aguilar-Faisal JL, et al. Phytochemicals in skeletal muscle health: effects of curcumin (from Curcuma longa Linn) and sulforaphane (from Brassicaceae) on muscle function, recovery and therapy of muscle atrophy. Plants 2022; 11(19): 2517.
6. Zhang J, Zheng J, Chen H, Li X, Ye C, Zhang F, et al. Curcumin targeting NF-κB/ubiquitin-proteasome-system axis ameliorates muscle atrophy in triple-negative breast cancer cachexia mice. Mediators of Inflammation 2022; 2022.
7. Lyu W, Kousaka M, Jia H, Kato H. Effects of Turmeric Extract on Age-Related Skeletal Muscle Atrophy in Senescence-Accelerated Mice. Life 2023; 13(4): 941.
8. Moradi Y, Zehsaz F, Nourazar MA. Concurrent exercise training and Murf-l and Atrogin-1 gene expression in the vastus lateralis muscle of male Wistar rats. Apunts Sports Medicine 2020; 55(205): 21-7.
9. Al-Jarrah M, Ahmad MB, Maayah M, Al-Khatib A. Effect of exercise training on the expression of p53 and iNOS in the cardiac muscle of type I diabetic rats. Journal of Endocrinology and Metabolism 2012; 2(4-5): 176-80.
10. Vijayakurup V, Carmela S, Carmelo D, Corrado T, Srinivas P, Gopala S. Phenethyl caffeate benzo [kl] xanthene lignan with DNA interacting properties induces DNA damage and apoptosis in colon cancer cells. Life Sciences 2012; 91(25-26): 1336-44.
11. Pomiès P, Blaquière M, Maury J, Mercier J, Gouzi F, Hayot M. Involvement of the FoxO1/MuRF1/Atrogin-1 signaling pathway in the oxidative stress-induced atrophy of cultured chronic obstructive pulmonary disease myotubes. PLoS One 2016; 11(8): e0160092.
12. Vechetti-Junior IJ, Bertaglia RS, Fernandez GJ, de Paula TG, de Souza RW, Moraes LN, et al. Aerobic exercise recovers disuse-induced atrophy through the stimulus of the LRP130/PGC-1α complex in aged rats. Journals of Gerontology Series A: Biomedical Sciences and Medical Sciences 2016; 71(5): 601-9.
13. Stefanetti RJ, Lamon S, Wallace M, Vendelbo MH, Russell AP, Vissing K. Regulation of ubiquitin proteasome pathway molecular markers in response to endurance and resistance exercise and training. Pflügers Archiv-European Journal of Physiology 2015; 467: 1523-37.
14. Zhao Z, Li C, Xi H, Gao Y, Xu D. Curcumin induces apoptosis in pancreatic cancer cells through the induction of forkhead box O1 and inhibition of the PI3K/Akt pathway. Molecular Medicine Reports 2015; 12(4): 5415-22.
15. Osali A. Aerobic exercise and nano-curcumin supplementation improve inflammation in elderly females with metabolic syndrome. Diabetology & Metabolic Syndrome 2020; 12: 1-7.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
